25%胰酶消化,以3000/孔接种于6孔板中,培养10天至两周。再进行HE染色检测细胞克隆存活。 7 siRNA沉默自噬关键基因A

25%胰酶消化,以3000/孔接种于6孔板中,培养10天至两周。再进行HE染色检测细胞克隆存活。 7.siRNA沉默自噬关键基因Atg5和Atg7 取对数生长期耐药食管癌细胞EC109/CDDP,以1×105、孔接种于6孔板中,转染时细胞要达到90~95%的融合,培养24h,吸弃培养基,细胞换成在含血清和双抗的正常培养基中,每孔2ml培养基,放入培养箱中培养,等待转染。配制溶液A:每100μl培养基中含有150ng Atg5siRNA或Atg7siRNA,在溶液A中加入转染试剂12μ1/孔,加入的时候要小心滴入,并轻轻摇使溶液混合均匀,室温中放置10min。每孔100μl轻轻加入6孔板中,待6孔板都加完后,画十字的轻轻晃动平移6孔板使溶液混合均匀。放入培养箱中培养48h。48h后采用western blot方法检测Atg5或Atg7确定敲除效果。之后同样操作转染步骤,转染48h后加入顺铂2.5μM处理48h,用0.25%胰酶消化,以3000/孔接种于6孔板中,培养10天,再进行HE染色,观察克隆存活情况。8.流式细胞术检测顺铂对敏感细胞和耐药细胞凋亡的影响 取对数生长期EC109和EC109/CDDP细胞,以3×105/well接种于60mm培养皿中,培养24h,吸弃培养基,加入顺铂2.5μM处理细胞48h,撤去药物,分别1天,2天和4天后收集细胞,用不含EDTA Trypsin消化,2ml/well,消化时间要短,注意观察,一消化下来就马上用全培终止消化,收集在15ml离心管中,800rpm,5min;用PBS洗两遍,第一遍PBS的量2ml/Tube,800rpm,5min;第二遍PBS的量2ml/Tube,并转移至流式管,800rpm,5min;倒掉上清液,用滤纸倒靠滤干;配制1xBinging

Buffer,以100μl/Tube加入流式管中悬浮细胞,加入PI2.5μl/Tube,

GSK1120212小白鼠 FITC2.5μl/Tube;室温放置10min;最后以400μl/Tube加入1xBinging Buffer,流式机上样检测。 9.p-半乳糖苷酶(SA-β-Gal)活性分析U0126对顺铂促衰老作用的影响 取对数生长期EC109和EC109/CDDP细胞,以1×105/well接种于6孔板中,培养24h,吸弃培养基,加入顺铂2.5μM处理细胞48h,撤去药物,分别1天,2天和4天后吸弃培养基,每个孔用1ml PBS各洗两次,小心吸取防止细胞掉落,每个孔加入1.5ml1×Fixation Buffer室温中放置6-7分钟,在固定的这段时间内配制Staining Mixture,固定后每个孔用1ml PBS各洗三次后,加入新鲜配制好的Staining Mixture染液中,37℃孵育过夜,显微镜下观察细胞蓝染细胞数目。每种细胞计数四个视野,每个视野至少100个细胞,计算细胞染色阳性率。 为了研究联用U0126后对顺铂诱导食管癌细胞衰老的影响,取对数生长期EC109和EC109/CDDP细胞,以1×105/well接种于6孔板中,培养24h,吸弃培养基,加入顺铂2.5μM, U0126和顺铂2.5gM联用U0126处理细胞48h,撤去药物,吸弃培养基,按上述步骤检测食管癌细胞衰老情况。

10.MAPKs和mTORC1通路活性的检测 药物处理细胞后,收集细胞并提取总蛋白。分别使用抗ERK1/2, phosphor-ERK1/2, p38, phosphor-p38, AZD2281分子重量 JNK, phosphor-JNK的单克隆抗体(cell signaling卫生),采用western blot的方法,检测蛋白的磷酸化来反应通路的激活或抑制。 mTORC1下游有两个关键的底物70kDa核糖体蛋白S6激酶(70kDa S6Kinase, S6K)和真核翻译起始因子4E(eIF4E)结合蛋白1(eukaryotic translational initiation factor4E-binding protein1,4E-BP1)。活化的mTORC1磷酸化激活S6K,磷酸化4E-BP1可以解除对eIF4E的抑制。这两者的磷酸化程度同mTORC1活性正相关。此外,mTOR在Ser2481位点上会自我磷酸化。当mTORC1活性增强时,该位点上的磷酸化也会增强。因此,我们可以通过检测S6K,4E-BP1和mTOR的磷酸化来显示mTORC1的活性。具体方法为:药物处理细胞后,收集细胞并提取总蛋白。采用western blot的方法,检测mTOR,phospho-mTOR(ser2481), S6K, phosphor-S6K,4E-BP1和phospho-4E-BP1的表达。 11.裸鼠移植瘤模型研究氯喹与顺铂联合用药后对移植瘤生长的影响 建立裸鼠人食管癌细胞移植瘤模型的方法:4到6周的雌性BALB/c nu/nu裸鼠用于该研究。将肿瘤细胞悬液接种到裸鼠的右背部皮下,每只裸鼠接种肿瘤细胞的个数为2×106。然后每三天用游标卡尺测量一次肿瘤的大小。肿瘤的大小按照以下公式计算:V(体积)=L×W2/2,其中L是肿瘤纵轴的长度,W是肿瘤横轴的长度。当肿瘤的体积均值达到约130mm2,开始药物处理。按照如下方案给药:(1)对照组;(2)顺铂给药组(3)氯喹给药组;(4)联合给药组。给药过程中按上述方法每三天测量肿瘤的大小。除了检测肿瘤体积这一指标外,我们还拟检测肿瘤组织中的细胞自噬。给药结束后,取出肿瘤组织并处死裸鼠。肿瘤组织切片后透射电子显微镜观察自噬体的形成。 哪里 12.统计学分析 采用GraphPad Prism5.0软件包进行数据分析,数据结果以均数±标准差(Mean±SD)表示;两组之间均数比较采用两样本t检验,三组及以上均数比较采用One-way ANOVA,多个处理组与一个对照组的比较采用Dunnett检验,P<0.0001),顺铂处理后酸性囊泡数目显著多于对照组(P<0.0001),氯喹(10,20,50μM)联用顺铂组的克隆数目显著低于顺铂组(P<0.0001)。Atg5敲除联用顺铂克隆数目显著低于空白敲除顺铂组(P<0.0001),都显著高于0h组(P<0.0001),都显著高于0h组(P<0.0001),都显著高于0h组(P<0.0014),显著高于0h组(P<0.0001),再通过Tukey检验分析,发现U0126联用顺铂组的克隆数目显著高于顺铂组(P0.

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